【摘要】目的进行斑点杂交条件的建立及优化。方法采用带正电荷的尼龙膜对斑点杂交的每一步骤进行优化，包括预杂交液，杂交液，洗涤和封闭液等及各步反应时间，并采用最终确立的条件检测糖基转移酶基因多肽：N-乙酰氨基半乳糖转移酶2（pp-GalNAcT2）在K562、NB4、NIH3T3和SGC7901细胞株中的差异表达以验证膜杂交条件的可行性。结果建立并优化了膜斑点杂交的条件，本底清晰，结果可靠。结论建立的斑点杂交技术经济简便，切实可行。

【关键词】斑点杂交；糖基转移酶；基因

Theestablishmentandoptimizationofthedotblotprerequisite

【Abstract】ObjectiveToestablishandoptimizethedotblottechnique.MethodsWeusedthepositivelychargednylonmembranestooptimizeexperimentsforthedotblotincludingprehybridizationsolution，hybridizationsolution，washingbuffer，blockingsolutionetal，andthetimesofeverystep.Inordertovalidateitsfeasibility，weanalyzedtheexpressionofppGalNAc-T2indifferenttumorcelllinesbydotblotassayusingtheestablishedhybridizationsystem.ResultsWeestablishedandoptimizedthedotblottechniquewhichhadreliableresultsandlowbackground.ConclusionTheestablisheddotblottechniqueispracticableandeconomical.

【Keywords】dotblot；glycosyltransferase；gene

基因的表达分析研究是分子生物学实验中较为常用的手段，主要有Northernblot和斑点杂交(dotblot)等，因斑点杂交无需转膜，且DNA或RNA相对固定在一定的区域内，实验要求相对简单，因此斑点杂交更易为实验者所接受。目前一般均用商品化的试剂盒，但其价格昂贵，不是一般实验室所能普及，因此我们采用自配的试剂建立并优化了一套斑点杂交方法，无需特殊设备，经济简便，结果可靠。

1材料与方法

1.1多肽N-乙酰氨基半乳糖转移酶2（UDP-GalNAc:polypeptideN-acetylgalactosaminyltransferases2，pp-GalNAcT2EC2.4.1.41）基因的获得。取pp-GalNAcT2克隆载体转染DH5α工程菌，筛选白色阳性克隆，抽取质粒，用M13正向、反向引物进行克隆PCR，M13Forward5′-GTAAAACGACGGCCAG－3′，M13Reverse5′－CAGGAAACAGCTATGAC－3′，电泳鉴定结果，可见约1200bp左右的条带。即获得相应的ppGalNAc-T2cDN段。

1.2采用T2特异的寡核苷酸探针进行斑点杂交法条件的建立及优化探针序列如下：5′-GAAAGACCTTCATCACAGCAATGGAGAAGAA，与ppGalNAc-T2cDNA序列互补，长31bp。探针合成及探针5′端生物素标记均由上海生工生物工程公司完成。

1.2.1斑点杂交操作程序(1)以上述所得pp-GalNAcT2的cDN段以1NNaOH和200mM的EDTA对比稀释，使成0.4NNaOH和10mM的EDTA的终浓度。(2)把稀释的pp-GalNAcT2的cDN段在100℃变性5min，迅速置冰，冰冷10min以上。(3)膜（购自Amersco公司，带正电荷）用灭菌双蒸水浸泡10min，悬空晾干。(4)每点2μl把pp-GalNAcT2的cDN段点在尼龙膜上，湿膜在紫外灯下照2min，取出让膜干燥。(5)杂交时以2×SSC浸膜5min，装入杂交袋，根据VECTORNIT软件计算杂交温度的方法确定杂交温度为42℃。以每100cm2膜加20ml的预杂交液（50％的去离子甲酰胺，5×SSC，0.1%SDS，0.1%BSA，0.1%PVP，用pH7.5的PB调终体积）于42℃预杂交2～3h。(6)弃去预杂交液，在杂交液（50％的去离子甲酰胺，5×SSC，0.1%SDS，0.1%BSA，0.1%PVP，10％的硫酸葡聚糖，100μg/ml的剪切的鲑鱼精DNA，用水调终体积）中加入适量探针，以每100cm2膜加10ml的杂交液于42℃杂交过夜。(7)用足量洗涤液1（2×SSC，0.1%SDS）于42℃洗涤2次，再用洗涤液2（0.5×SSC，0.1%SDS）于55℃严谨洗涤2次。(8)用蒸馏水淋洗膜2～5min，然后用封闭液（不同浓度的BSA，0.1MNaCl，0.2%Triton-100，0.1MTris，pH7.5）封闭。(9)倒出封闭液，加入用封闭液配制的适当比例稀释的卵白素-碱性磷酸酶（购自上海华舜生物工程有限公司），37℃孵育30min。(10)洗涤液3（0.1MTris，0.15MNaCl，0.3%Tween20pH7.5）在37℃洗膜2次，检测缓冲液（0.1MTris，0.1MNaCl，0.1MMgCl2，pH9.5）平衡，再以每10ml检测缓冲液加66μlNBT和11μlBCIP(均购自上海华舜生物工程有限公司)的显色液显色。(11)显色结束后以TE终止，用扫描仪获取图像。

1.2.2斑点杂交建立及优化程序(1)尼龙膜上不点任何样品，以下述条件行假杂交反应。杂交液中探针的终浓度为：200ng/ml、100ng/ml、50ng/ml、10ng/ml；酶的稀释比例为：1／400、1／800、1／2000、1／5000；封闭液中BSA的终浓度为：2％，封闭2h；杂交后洗涤液1和2分别洗2次，每次1h；封闭后洗涤液洗2次，每次1h；检测缓冲液平衡1h；显色30min。

（2）以（1）所获得的最佳本底，在尼龙膜上点上pp-GalNAcT2的cDN段，其余条件不变，封闭液中BSA的浓度设计成2％、3％和5％三梯度进行杂交反应

（3）以（2）所获得的最佳条件，改进以下条件：①杂交后洗涤时间每次1h;每次30min；每次10min；②封闭液封闭时间2h;1.5h;50min；③封闭后洗涤时间由每次1h;每次40min;每次20min；④检测缓冲液平衡时间由1h；30min;10min；⑤显色以出现清晰的阳性信号，本底最低为尺度，一般在15min左右，时间延长本底升高。

1.3斑点杂交法检测K562、NB4、NIH3T3和SGC7901细胞株pp-GalNAcT2的表达差异NIH3T3成纤维细胞、胃癌细胞株SGC-7109、白血病细胞株K562和NB4购自上海生化细胞所；RNA抽提试剂TRIZOL、PCR试剂盒、pUCMixDNAmarker和ladder购自Invitrogen公司，六随机引物购自Takara公司。实验所用pp-GalNAcT2和β微球蛋白（内对照）引物采用Genetyx软件设计，并经GenBankBlast同源检索后由上海生工生物技术公司合成。

β-MG引物序列为：

F：5′-CTCGTGCTACTCTCTCTTTC-3′

R：5′-CATGTCTCGATCCCACTTAAC-3′

预期扩增产物长度330bp。

ppGalNAc-T2引物为：

F：5′-GAAAGAATTAGGAAGGGTCAGAAC-3′

R：5′-CTGTGTCAATGTAAACATAGCTC-3′

预期扩增产物长度为668bp。

采用TRIZOL法抽提K562、NB4、NIH3T3和SGC7901细胞株RNA，测A260/A280比值和电泳图谱鉴定抽提完整性，测A260定量，六随机引物逆转录制作cDNA。倍比稀释点膜，用pp-GalNAcT2特异的寡核苷酸探针与膜杂交；同时以上述获得的K562、NB4、NIH3T3和SGC7901细胞株cDNA加pp-GalNAcT2和β-MG正反向引物行RT－PCR来验证斑点杂交结果。

2结果

(1)尼龙膜上不点任何样品所进行的假杂交反应结果如图1所示，可见以杂交液中探针的终浓度为10ng/ml，酶的稀释比例为1／5000时本底最低；以此条件，在尼龙膜上点上pp-GalNAcT2的cDN段，封闭液中BSA的浓度设计成2％、3％和5％三梯度，其余条件不变的杂交反应结果如图2所示，可见以5％的BSA封闭效果最佳；再以上述确立的条件改进杂交反应各步的时间，以简化实验，如图3所示，可见条件2和条件3体系下的结果都是可以接受的，但条件3更为简化。

(2)以上述确立的杂交反应的条件用斑点杂交法检测K562、NB4、NIH3T3和SGC7901细胞株GalINAcT2的表达差异，以验证所确立的条件的实际可行性，结果如图4所示，pp-GalNAcT2的表达水平依次为K562白血病细胞>胃癌细胞SGC7901>NB4白血病细胞，在NIH3T3成纤维细胞中未检测到表达。同时再行RT-PCR确证斑点杂交的结果，如图5，6所示，与斑点杂交结果基本一致。

3讨论

我们参照分子克隆［1］和Superarray［2］操作手册，设计并改进预杂交液和杂交液。由于采用带正电荷的尼龙膜为支持介质，在碱性条件下更有利于DNA与膜结合，而预杂交的目的是封闭膜上的非特异性结合部位，因此预杂交液采用pH7.5的PB配制并调终体积；而杂交液中的探针要尽量减少与膜的非特异性杂交，因此杂交液用水来调终体积，pH值控制在6.5左右。同时，对杂交过程中所涉及的每一个步骤及试剂的配制，我们都进行优化，最终所确立优化过程如下：采用自配的预杂交液和杂交液，杂交液中探针浓度为10ng/ml，杂交后洗涤液1和2各洗涤2次，每次10min，5%的BSA封闭液封闭50min，封闭后加酶稀释比为1／5000，封闭后洗涤液洗2次，每次20min，检测缓冲液平衡10min，显色以出现阳性信号，本底最低为标准。

图1不同的探针及酶浓度进行假杂交反应

A：探针浓度为200ng/ml，酶浓度为1/400

B：探针浓度为100ng/ml，酶浓度为1/800

C：探针浓度为50ng/ml，酶浓度为1/2000

D：探针浓度为10ng/ml，酶浓度为1/5000

图2三种不同BSA浓度显色对比

(A：BSA为5%；B：BSA为3%；C：BSA为2%)

图3不同洗涤、封闭和显色时间的显色对比

A：条件1；B：条件2；C：条件3

图47901、NIH3T3、NB4和K562四种细胞的斑点杂交图

图示1～6稀释比例为1、1/2、1/4、1/8、1/16和1/32，每点cDNA上样量为12μl，原始浓度折算成RNA为2.4μg，采用寡核苷酸探针与之杂交

图5不同细胞株pp-GalNAcT2的RT-PCR电泳图谱，其中1：NIH3T3细胞；2：SGC7901细胞；3：NB4细胞；4：K562细胞；M：marker；MG：β微球蛋白(内对照)

Fig6RT-PCRanalysisofpp-Ga1NAcT2expressioninSGC7901，K562，NB4andNIH3T3cells

为进一步检验膜杂交条件的可行性，我们用胃腺癌SGC7901细胞、白血病K562、NB4细胞和NIH3T3成纤维细胞的cDNA以一定的稀释比进行斑点杂交，检测pp-GalNAcT2在这四种细胞中的差异表达，得到的相对表达水平为：K562白血病细胞>胃癌细胞SGC7901>NB4白血病细胞，在NIH3T3成纤维细胞中未检测到表达。pp-GalNAcT2主要表达于富含粘蛋白的组织细胞中［3］，一般说来，能分泌较多粘蛋白的细胞pp-GalNAcT2有较高表达，如正常胃和大肠粘膜，胃癌细胞株SGC7901中pp-GalNAcT2mRNA的表达很高是可以理解的；NIH3T3是一种成纤维细胞，来源

于非上皮组织，不分泌粘蛋白，所以其pp-GalNAcT2的表达甚低。K562和NB4均是白血病细胞，其pp-GalNAcT2表达也较高，其确切的生物学意义有待阐明。虽然我们采用了严谨的洗涤条件但也不排除杂交液中的探针与cDNA之间发生非特异性杂交，因此对每种细胞的cDNA行pp-GalNAcT2特异的RT-PCR，以β-MG为内对照，对所得的T2和β-MG条带扫描定量，比较四种细胞T2的相对表达高低，结果是与斑点杂交一致，证明斑点杂交结果是可信的，其杂交条件是可行的。另外，RT-PCR中检测到在NIH3T3细胞中有微量的T2表达，而在斑点杂交中未检出，说明显

色法斑点杂交在检测低表达基因的灵敏度上可能还不够，可能需要增加上样量或换用灵敏度更高的显影或检测系统来检测低表达基因的表达水平。但是，增加cDNA上样量会带来相当多的问题，主要是RNA的逆转录的效率，因为增加cDNA上样量必然需要增加逆转录所需的RNA用量。当然，也可以通过几管cDNA浓缩获得，但操作相对烦琐。另外，可以直接做RNA的斑点杂交，这样增加RNA上样量相对容易，但RNA容易降解，操作要求高，复杂，不如cDNA的斑点杂交简便，因此，相对可行的方法可能是根据实验所需，采用所建立的cDNA斑点杂交体系，用不同灵敏度的检测系统，如化学发光法、同位素标记法或荧光标记法等检测不同的基因表达。

总之，我们成功地建立了cDNA斑点杂交体系，无需特殊的仪器设备，试剂成本低廉；阳性信号清晰，结果可靠，有助于在基因的差异表达等研究中的应用。

【参考文献】

1J.萨姆布鲁克，E.F.弗里特，T.曼尼阿蒂斯.分子克隆实验指南.北京:科学出版社，1993，362-395.

2.

3KudoT，IkeharaY，TogayachiA，etal.Up-regulationofasetglycosyltransferasegenesinhumancolorectalcancer.LabInvest，1998，78(7):797-811.